Result 5: X1.1载体可以将脑内皮细胞转化为一个生物工厂,用于将分泌的蛋白质输送到大脑
血管在脑区各个角落的分布,使脑血管内皮细胞称为“生物工厂”成为可能。
SPARCL1/Hevin基因的下调或错义突变在许多神经系统疾病中都有报道,如自闭症、精神分裂症和抑郁症。在发育中的小鼠视觉皮层中,Hevin对于丘脑皮质连接的形成和可塑性是特别需要的。Hevin基因敲除小鼠(Hevin KO)在出生后的前三周和成年后都表现出明显的谷氨酸偶体转运蛋白2阳性(VGluT2+)丘脑皮质突触的缺失(Figure 4E)。为了确定脑内皮细胞异位表达Hevin是否可以挽救Hevin-KO小鼠的缺陷,作者使用AAV9-X1.1-CAG-Hevin-EGFP的载体,尾静脉注射Hevin-KO小鼠,3周后,结果显示:在脑内皮细胞中,Hevin蛋白稳健而特异性的表达(Figure 4F)。结果表明,由脑内皮细胞产生和分泌的Hevin能够模拟内源性Hevin功能,挽救Hevin-KO小鼠严重缺乏的丘脑皮质突触形成。因此,该系统说明了Hevin相关疾病的潜在治疗策略。
Result 6: X1载体家族在体外有效地转导人脑内皮细胞
AAV9-X1感染内皮细胞(HBMECs)在MOI为3*104时,X1转导了42%的HBMEC,比亲本AAV9高180倍。进一步设计的版本X1.1和X1.2分别转导了44%和53%的HBMEC。
Result 7: X1.1有效地转导体外培养的猕猴和人脑切片
AAV9-X1在HBMECs中的强大表现促使我们研究它们在系统中的功效,该系统可能更好地模拟非人灵长类动物体内条件。因此,作者转向体外脑切片培养系统(Figure 5B)。这些切片是从灵长类动物(长尾猕猴,Macaca Nemestrina)的大脑中新鲜提取的,并在体外培养。
7-10天后,我们从组织中提取DNA和RNA,并使用下一代测序(NGS)计算组织中AAV库中变体的富集程度。与AAV9相比,X1.1的DNA和RNA分别增加了4倍和25倍。值得注意的是,在离体脑切片中,X1.1诱导的蛋白表达主要见于神经元。结果说明:X1.1在猕猴和人类离体切片中的强劲表现(Figure 5F)表明,该衣壳在未来的转化中具有巨大的潜力。
Result 8: X1.1在静脉给药后有效靶向恒河猴的中枢神经系统
完成了AAV9-X1.1在离体NHP和人脑模型中转导效率的验证后,作者进行了猴的体内实验。作者同时测试了AAV9-CAG-EGFP与AAV9-X1.1-CAG-EGFP,两种载体在新生恒河猴,每只猴5E+13vg/kg,表达4周后,作者观察到与AAV9相比,X1.1在包括皮层、舌回(LG)、海马和小脑在内的大脑区域有较强的表达(Figure 6B),进一步的免疫组化染色显示,皮层中约98%的X1.1转导细胞是神经元,而一小部分靶向细胞是内皮细胞或胶质细胞(Figure 6D、E)。X1.1的神经元转导比AAV9高约45倍(Figure 6F)。
新生猕猴中X1.1的嗜神经谱与啮齿动物中X1.1的嗜内皮细胞谱之间的差异开辟了潜在的应用,并强调了跨物种分析AAV载体的必要性。这些实验表明,新的衣壳AAV-X1.1可以有效地转导旧大陆猴幼猴的中枢神经系统,使其成为研究神经系统疾病的潜在有用载体。
小 结
本文讲解了一款新载体AAV-X1.1,尚未搭配内皮细胞的特异性启动子的时候,就已经展现出强劲的血管内皮细胞的精准靶向性。后续的吉凯内部测试中,如果新载体AAV-X1.1,搭配上特异性启动子(TIE或ICAM2),相信会有更好的效果。此外,作者还通过更换血清型,解决了中和抗体,影响AAV二次给药的难题。
目前吉凯基因正在生产AAV-X1.1的试用装,内部测试后,将会推广给老师们使用。
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3.sakova, A., Fehlmann, T., Keller, A. & Quake, S. R. A mouse tissue atlas of small noncoding RNA. Proc. Natl Acad. Sci. USA 117, 25634–25645 (2020).