适用于从含有杂质的DNA溶液中回收100bp-10kb的DNA。

·10-15分钟（三个步骤）内即可完成DNA的清洁回收。

·最高可以达到95%的回收效率。

·核酸纯化柱无须平衡液处理，可最大吸附10 μg DNA。

·溶液中所含的pH指示剂可直观地判断溶液中DNA与硅胶膜的最适宜结合条件。

·起始样品：酶反应体系或者含有杂质（比如盐份和酚/氯仿残留、糖原或多糖残留、蛋白质残留等）的DNA   溶液。

·所需仪器：可适合2ml离心管使用的离心机。                                                                

右图:
30 μl 100 bp DNA Marker经Simgen PCR清洁试剂盒清洁后，用30μl Buffer TE洗脱（A，B，C），与未清洁的DNAMarker（50%，100%）对照各个片段的回收效率。
1.5% TAE 琼脂糖凝胶

产品原理：
硅胶膜可在高盐条件下结合DNA，又可在低盐条件下与DNA分离。用于清洁目的的含DNA溶液中的引物、单核苷酸、酶、矿物油、盐离子等杂质因为没有与DNA相似的特性，所以被分离除去。结合在纯化柱上的DNA经洗涤液洗涤后，即可回收到高纯度的DNA。

操作步骤
在需要清洁的DNA溶液中加入结合缓冲液，混匀后加入到核酸纯化柱中，经过离心步骤使DNA结合到纯化柱上，其他杂质则被过滤出去。经清洗液洗涤一次纯化柱上的DNA后，DNA即可被TE溶液洗脱下来。

• DNA测序
• 基因芯片分析
• DNA连接与转化
• 限制性酶切
• 标记
• 微注射
• PCR 
• 体外转录

常见问题分析

1.     回收不到DNA或者DNA的回收效率低

可能的原因：

1）      Buffer WG或Buffer WB中未加入无水乙醇，应按比例补加无水乙醇。如果是错误地加入了其他试剂，请向我公司技术部寻求帮助。

2）      Buffer WG或Buffer WB中错误地加入了70%乙醇。请向我公司技术部寻求帮助。

3）      DNA的洗脱效率差。参考第3页柱纯化技术中的第4点“洗脱DNA”内容优化DNA的洗脱方案。

4）将溶液加入到纯化柱前应观察BufferG或Buffer P是否保持着原来的橙黄色，如果溶液变为紫红色，必须加入约10 μl 3 M醋酸钠（pH 5.0）使溶液恢复至原来的橙黄色，否则将严重影响DNA结合到纯化柱上。

仅凝胶回收：

5）制作的凝胶从加样孔至DNA泳动方向呈现为一个降低的斜面，DNA在泳动的过程中大量地流失到电泳缓冲液中。制作琼脂糖凝胶时应注意放平制胶槽，并加入足够量的凝胶液。

6）凝胶没有完全被溶解，DNA仍保留在未溶解的凝胶中。在50°C溶胶时每隔2-3分钟请将离心管漩涡振荡数秒以帮助凝胶彻底溶解。

7）在凝胶溶解后的溶液中加入异丙醇出现雾状沉淀。出现该种现象主要是因为凝胶没有被彻底溶解，此时应注意不要省略后续的Bufffer G的洗涤步骤，并且加入BufferG到纯化柱中后室温静置1分钟，以增强对未溶解的凝胶的洗涤效果。

2.    回收的DNA生物学活性差

1）  回收的DNA中盐分残留量过高。向纯化柱中加入BuffferWG或者Bufffer WB后，室温静置5分钟后再离心，可最大程度地洗去纯化柱上残留的盐分。

2）  回收的DNA中乙醇残留量过高。注意不可省略高速空离（14000 rpm 离心1分钟）步骤。